酵母培养物对山羊瘤胃发酵日增重与饲料消化率的影响
本试验拟研究酵母培养物对山羊瘤胃发酵、饲料消化率和日增重的影响。试验选用经过筛选鉴定的酵母菌种，采用固体发酵的方法制备酵母培养物（活菌数达5×108个/g），试验动物为14头山羊，每头山羊按10 g/d添加酵母培养物。结果表明，与对照组相比，添加酵母培养物组未显著影响山羊平均日增重、氨氮浓度、挥发性脂肪酸浓度、干物质、粗蛋白和粗脂肪的消化率，但显著提高瘤胃pH值。结果说明，酵母培养物有稳定瘤胃pH的作用，但对山羊生产性能的影响不显著。
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言2
1材料与方法2
1.1酵母培养物的制备2
1.1.1酵母菌的制备 2
1.1.2麸皮发酵饲料的制备2
1.2试验动物与分组2
1.3试验动物管理2
1.4样品的采集与处理2
1.4.1瘤胃液的采集2
1.4.2粪样的采集2
1.5样品分析 2
1.5.1乳酸的测定2
1.5.2氨氮的测定3
1.5.3挥发性脂肪酸的测定3
1.5.4饲料消化率的测定3
1.6数据处理与统计分析3
2结果与分析3
2.1 YC对山羊瘤胃pH值的影响3
2.2 YC对山羊瘤胃乳酸浓度的影响4
2.3 YC对山羊瘤胃氨氮浓度的影响4
2.4 YC对山羊瘤胃挥发性脂肪酸浓度的影响5
2.5 YC对山羊日增重和饲料消化率的影响5
3讨论5
致谢6
参考文献6 酵母培养物对山羊瘤胃发酵、日增重与饲料消化率的影响
引言
引言：酵母培养物（Yeast culture, YC）是指在特定工艺条件控制下，由酵母菌在特制的培养基上经充分的厌氧发酵而形成的微生态制品，主要由酵母细胞外代谢产物、经发酵后的培养基和少量已无活性的酵母细胞构成，其代谢产物含有丰富的维生素、氨基酸、寡糖、小分、子肽、醇类、酯类及其它一些未知的促生长因子。酵母培养物属于益生素范畴，是一种理想的替 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: *351916072*
代抗生素的添加剂[12]。目前酵母培养物产品主要分为：以酵母活细胞为主的产品，富含大量活性酵母，能够耐受高温和强酸，在饲料制粒和胃酸环境能够有效保持活性，另外还有含酵母代谢产物为主的产品[3]。酵母培养物多用作饲料添加剂，且以反刍动物效果最好[4]。研究表明，活酵母菌可在反刍动物胃肠道中大量繁殖，从而有效改善胃肠环境和菌群结构，稳定pH值，在生产性能方面体现出提高了奶牛的产能性能 [57]。然而，以前的研究主要集中于酵母培养物对奶牛瘤胃发酵与生产性能的影响，酵母培养物对山羊的瘤胃发酵和生产影响，少量的研究表明，添加酵母培养物能够改善瘤胃发酵，降低pH值，提高山羊采食量和日增重[811]。本试验拟通过在山羊日粮中添加酵母培养物，研究其对肉用山羊的生产性能和其对瘤胃内环境和饲料消化率的影响。研究结果对于阐明酵母培养物的作用机制，以及了解其应用效果具有重要意义。
材料与方法
酵母培养物的制备
酵母菌的制备
将保藏菌种经斜面活化后，用接种环挑取菌种接于装有30 mL酵母菌培养基的250 mL三角瓶中，摇床转速为170 r/min，培养48 h。以1%接种量将三角瓶中菌种接入发酵罐中，进行酵母菌发酵培养，转速为200 r/min，恒温28℃培养24 h。
麸皮发酵饲料的制备
将上述酵母液接种于麸皮中，发酵48 h后，结束发酵。采用血球计数仪计数培养物中活酵母数。数量为1*108左右。
试验动物与分组
试验在大学动物房进行，选用14头年龄、体重相近且健康山羊，单圈饲养。试验采用随机区组试验设计，分为2组，即酵母培养物组（YC）和对照组，每组7只山羊。饲喂期为63天。
动物饲养管理
试验前连续3 d于晨饲前空腹称重，根据山羊的平均体重确定营养水平和采食量。干物质采食量按体重的3.5%计算，精粗比为6：4。饲料酵母的添加剂量为10 g酵母培养物。试验期内每日喂两次（8：00、17：00），单槽饲喂，自由饮水，保持圈舍卫生。
样品的采集与处理
瘤胃液采集
于试验期第63d晨饲后0 h和6 h通过口腔导管采集山羊瘤胃液，立即测定其pH值（采用手持性便携pH计），分装到5支7 mL离心管中，其中两管瘤胃液经 6000转离心 15 min，取上清，20℃冷冻保存用于乳酸和氨氮测定。
粪样的采集
于试验期第60、61、62 d连续采集直肠粪样，分2个时间点采集，新鲜粪便采集后立即加入稀盐酸，20℃冷冻保存，采用内源指标剂法测定相关指标（内源性标示物：酸不溶灰分）。
样品分析
乳酸的测定
乳酸的测定采用试剂盒法（南京建成生物工程研究所），按照试剂盒说明书，分别向空白管、标准管、测定管中相对应地加入0.02 mL蒸馏水、3 mmol/L标准液和待测样品，然后均加入1 mL酶工作液和0.2 mL显色剂，混匀后置于37 ℃水浴锅中准确反应10 min，再分别加入2 mL终止液，混匀，用空白管调零，在520 nm波长、1 cm光径下分别测各管吸光度值。
乳酸的计算公式如下：
氨氮浓度测定
参照冯宗慈等[12]的比色法进行测定。
挥发性脂肪酸的测定
利用岛津GC2014气相色谱仪进行测定。
饲料消化率的测定
采用内源指示剂法进行测定，即利用饲料中原有的酸不溶性灰分(AIA)作为标记物测定饲料消化率。饲料和粪便中的AIA根据Van Keulen和Young McCanthy等[13]的方法测定4 mol/LHCL不溶灰分。
饲料中各养分消化率的计算公式如下：
100
数据处理与统计分析
试验数据使用Excel（2013）进行初步整理后，采用SPSS 18.0对试验数据进行单因素方差分析（oneway ANOVA），数据以平均值±标准差表示。
结果与分析
目录
摘要1
关键词1
Abstract1
Key words1
引言2
1材料与方法2
1.1酵母培养物的制备2
1.1.1酵母菌的制备 2
1.1.2麸皮发酵饲料的制备2
1.2试验动物与分组2
1.3试验动物管理2
1.4样品的采集与处理2
1.4.1瘤胃液的采集2
1.4.2粪样的采集2
1.5样品分析 2
1.5.1乳酸的测定2
1.5.2氨氮的测定3
1.5.3挥发性脂肪酸的测定3
1.5.4饲料消化率的测定3
1.6数据处理与统计分析3
2结果与分析3
2.1 YC对山羊瘤胃pH值的影响3
2.2 YC对山羊瘤胃乳酸浓度的影响4
2.3 YC对山羊瘤胃氨氮浓度的影响4
2.4 YC对山羊瘤胃挥发性脂肪酸浓度的影响5
2.5 YC对山羊日增重和饲料消化率的影响5
3讨论5
致谢6
参考文献6 酵母培养物对山羊瘤胃发酵、日增重与饲料消化率的影响
引言
引言：酵母培养物（Yeast culture, YC）是指在特定工艺条件控制下，由酵母菌在特制的培养基上经充分的厌氧发酵而形成的微生态制品，主要由酵母细胞外代谢产物、经发酵后的培养基和少量已无活性的酵母细胞构成，其代谢产物含有丰富的维生素、氨基酸、寡糖、小分、子肽、醇类、酯类及其它一些未知的促生长因子。酵母培养物属于益生素范畴，是一种理想的替 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: *351916072*
代抗生素的添加剂[12]。目前酵母培养物产品主要分为：以酵母活细胞为主的产品，富含大量活性酵母，能够耐受高温和强酸，在饲料制粒和胃酸环境能够有效保持活性，另外还有含酵母代谢产物为主的产品[3]。酵母培养物多用作饲料添加剂，且以反刍动物效果最好[4]。研究表明，活酵母菌可在反刍动物胃肠道中大量繁殖，从而有效改善胃肠环境和菌群结构，稳定pH值，在生产性能方面体现出提高了奶牛的产能性能 [57]。然而，以前的研究主要集中于酵母培养物对奶牛瘤胃发酵与生产性能的影响，酵母培养物对山羊的瘤胃发酵和生产影响，少量的研究表明，添加酵母培养物能够改善瘤胃发酵，降低pH值，提高山羊采食量和日增重[811]。本试验拟通过在山羊日粮中添加酵母培养物，研究其对肉用山羊的生产性能和其对瘤胃内环境和饲料消化率的影响。研究结果对于阐明酵母培养物的作用机制，以及了解其应用效果具有重要意义。
材料与方法
酵母培养物的制备
酵母菌的制备
将保藏菌种经斜面活化后，用接种环挑取菌种接于装有30 mL酵母菌培养基的250 mL三角瓶中，摇床转速为170 r/min，培养48 h。以1%接种量将三角瓶中菌种接入发酵罐中，进行酵母菌发酵培养，转速为200 r/min，恒温28℃培养24 h。
麸皮发酵饲料的制备
将上述酵母液接种于麸皮中，发酵48 h后，结束发酵。采用血球计数仪计数培养物中活酵母数。数量为1*108左右。
试验动物与分组
试验在大学动物房进行，选用14头年龄、体重相近且健康山羊，单圈饲养。试验采用随机区组试验设计，分为2组，即酵母培养物组（YC）和对照组，每组7只山羊。饲喂期为63天。
动物饲养管理
试验前连续3 d于晨饲前空腹称重，根据山羊的平均体重确定营养水平和采食量。干物质采食量按体重的3.5%计算，精粗比为6：4。饲料酵母的添加剂量为10 g酵母培养物。试验期内每日喂两次（8：00、17：00），单槽饲喂，自由饮水，保持圈舍卫生。
样品的采集与处理
瘤胃液采集
于试验期第63d晨饲后0 h和6 h通过口腔导管采集山羊瘤胃液，立即测定其pH值（采用手持性便携pH计），分装到5支7 mL离心管中，其中两管瘤胃液经 6000转离心 15 min，取上清，20℃冷冻保存用于乳酸和氨氮测定。
粪样的采集
于试验期第60、61、62 d连续采集直肠粪样，分2个时间点采集，新鲜粪便采集后立即加入稀盐酸，20℃冷冻保存，采用内源指标剂法测定相关指标（内源性标示物：酸不溶灰分）。
样品分析
乳酸的测定
乳酸的测定采用试剂盒法（南京建成生物工程研究所），按照试剂盒说明书，分别向空白管、标准管、测定管中相对应地加入0.02 mL蒸馏水、3 mmol/L标准液和待测样品，然后均加入1 mL酶工作液和0.2 mL显色剂，混匀后置于37 ℃水浴锅中准确反应10 min，再分别加入2 mL终止液，混匀，用空白管调零，在520 nm波长、1 cm光径下分别测各管吸光度值。
乳酸的计算公式如下：
氨氮浓度测定
参照冯宗慈等[12]的比色法进行测定。
挥发性脂肪酸的测定
利用岛津GC2014气相色谱仪进行测定。
饲料消化率的测定
采用内源指示剂法进行测定，即利用饲料中原有的酸不溶性灰分(AIA)作为标记物测定饲料消化率。饲料和粪便中的AIA根据Van Keulen和Young McCanthy等[13]的方法测定4 mol/LHCL不溶灰分。
饲料中各养分消化率的计算公式如下：
100
数据处理与统计分析
试验数据使用Excel（2013）进行初步整理后，采用SPSS 18.0对试验数据进行单因素方差分析（oneway ANOVA），数据以平均值±标准差表示。
结果与分析
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