土豆淀粉对猪肠道PH值，淀粉含量和短链脂肪酸的影响
土豆淀粉对猪肠道PH值，淀粉含量和短链脂肪酸的影响[20200510205501]
摘要：本文旨在探讨不同来源淀粉日粮对猪肠道pH值，淀粉含量和短链脂肪酸（SCFAs）的影响。实验采用36头30kg的杜长大三元杂交公猪，分成对照组和试验组2个处理组，每个处理设3个重复栏，每栏6头猪。对照组饲喂含玉米淀粉的饲粮，试验组饲喂含等量的土豆淀粉的饲粮。试验结束时分别收集猪的回肠、盲肠和结肠的内容物，测定其pH值，淀粉含量和短链脂肪酸浓度。结果发现，土豆淀粉能够降低猪后肠的pH值，增加肠道内容物淀粉的含量，并且能促进短链脂肪酸的生成，尤其是丁酸的生成。结果说明，土豆淀粉有助于维持肠道健康，酸化肠道环境，促进有益产物SCFA的生成。
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关键字:淀粉；pH值；淀粉含量；短链脂肪酸
目录
摘要3
关键词3
Abstract3
Key words3
引言3
1材料与方法4
1.1材料 4
1.1.1试验淀粉4
1.1.2试验动物4
1.1.3试验猪基础日粮及营养水平4
1.2实验方法 4
1.2.1饲养试验4
1.2.2屠宰试验5
1.2.3样品收集5
1.2.4测定项目5
1.3数据处理 5
2结果与分析5
2.1不同类型淀粉对猪后肠PH值的影响5
2.2日粮及猪消化道内容物中的淀粉含量6
2.3不同淀粉来源对盲肠和结肠内容物中短链脂肪酸浓度的影响6
3讨论 8
4结论 9
致谢9
参考文献9
土豆淀粉对猪肠道pH值，淀粉含量和短链脂肪酸的影响
引言
引言
淀粉是谷物类饲料中主要的碳水化合物，按不同的分类标准可分为不同的种类。Englyst等依据淀粉的生物可利用性将淀粉分为3类[1]：快速消化淀粉( ready digestible starch , RDS)、缓慢消化淀粉(slowly digestible starch , SDS)和抗性淀粉( resistant starch , RS)。其中RS与前两种不同，它不能被小肠中的淀粉酶水解，本身或其降解产物能原封不动地到达结肠并被此处的微生物菌群发酵，从而发挥有益的生理作用。此现象引起了营养学家、生理学家和医学工作者的广泛兴趣。1993年，欧洲抗性淀粉协会( EURESTA)将RS定义为：不被健康人体小肠吸收的淀粉 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: ￥3^5`1^9`1^6^0`7^2$
及其降解产物的总和[2]。RS在结肠中发酵, 其代谢产物能较好地维持肠道酸性环境，加快食物在肠道内的转运速度，促进动物排便、增大粪便体积，使粪便水分含量增加、软化粪便[3]。然而， RS 自身直接产生的作用较少，这些功效主要通过结肠内发酵产生的次生产物，以及影响其它物质的代谢从而得到发挥。RS在大肠中被结肠微生物（厌氧菌）发酵或部分发酵后，产生挥发性SCFA、二氧化碳、甲烷和乙烷[4]。SCFA是大肠内细菌代谢的主要终产物，RS的多种生理功能主要是通过SCFA的调节来实现的[5-6]。SCFA 主要为乙酸、丙酸、丁酸等（含量大小顺序为乙酸>丙酸>丁酸），这些营养成分在生物代谢中发挥了重要作用。其中以丁酸的作用最强，丁酸不仅可以作为大肠上皮细胞尤其是末段结肠粘膜的主要能量底物、结肠菌的最好能源[7]，还可以影响营养物质的消化代谢和肠道微生物区系、增加免疫、促进肠道组织生长、调节肠道电解质平衡、降低肠道pH、提高某些消化酶的活性和抗氧化性能，以及增加肠道粘液素的分泌和抑制癌细胞生长[8-9]。
本实验主要以猪为对象，通过添加玉米淀粉和土豆淀粉两种不同类型的抗性淀粉，通过选择土豆淀粉( 抗性淀粉)和玉米淀粉( 可消化淀粉) 作为两种不同的淀粉来源，来研究这两种不同的淀粉对生长育肥猪后肠道pH值，淀粉含量和短链脂肪酸的影响。从不同碳水化合物对猪后肠健康指标的影响角度为合理选择碳水化合物的类型提供依据。
1 材料与方法
1．1试验材料
1．1．1试验淀粉 玉米抗性淀粉、土豆抗性淀粉。
1．1．2 试验动物 杜长大( 杜洛克♂，长白×大约克♀) 三元杂交猪。
1．1．3 试验猪基础日粮及营养水平 见表1
表1试验猪基础日粮及营养水平
日粮 生长期 育肥期
玉米淀粉组 土豆淀粉组 玉米淀粉组 土豆淀粉组
营养成分 (g/kg)
玉米淀粉 230.0 - 280.0 -
土豆淀粉 - 230.0 - 280.0
玉米 360.0 360.0 360.0 360.0
麦麸 90.0 90.0 120.0 120.0
豆粕 250.0 250.0 210.0 210.0
膨化大豆 30.0 30.0 - -
豆油 8.0 8.0 - -
磷酸氢钙 9.8 9.8 8.8 8.8
石灰石 7.8 7.8 7.7 7.7
氯化钠 3.0 3.0 3.0 3.0
维生素和矿物质预混料 10.0 10.0 10.0 10.0
L-赖氨酸 1.0 1.0 0.5 0.5
L-蛋氨酸 0.4 0.4
营养指数 (g/kg)
粗蛋白 174.5 174.5 147.3 147.3
淀粉 505.6 504.5 550.2 549.5
灰分 72.1 73.2 61.0 61.6
中性洗涤纤维 95.77 95.78 102.5 102.6
脂肪 32.0 32.0 19.0 19.0 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: ￥3^5`1^9`1^6^0`7^2$
/> 赖氨酸 9.8 9.8 8.0 8.0
表注：维生素和矿物质预混料(1%): VA 11000 IU；VD3 1000 IU； VE 16 IU； VK1 1mg； VB1 0.6 mg； VB2 0.6 mg； VB12 0.03 mg； VB6 1.5 mg； D-泛酸 6 mg； 烟酸10 mg； 叶酸 0.8mg； 胆碱800 mg； Fe 165 mg； Zn 165 mg； Cu 16.5 mg； Mn 30 mg；Co 0.15 mg； I 0.25 mg； Se 0.25mg.
1．2 试验方法
1．2．1 饲养试验
选择36头体重在23.78±1.87kg范围70天左右的杜长大杂交公猪，分成2个处理组，每组设6个重复，每个重复3头猪。两组分别饲喂玉米淀粉组和土豆淀粉组饲粮，在生长期，玉米淀粉和土豆淀粉占日粮的比列均是250 g/kg，当猪到达120日龄时，根据动物生长的营养需求调整纯化淀粉的含量，玉米淀粉和土豆淀粉占日粮的比列均是350 g/kg；重复组所饲喂的饲粮相同。试验预饲期为7天。饲喂方法采用群饲，自由采食，自由饮水。试验猪屠宰体重为110kg左右。
1．2．2屠宰试验
饲养试验结束后从对照组和试验组中每个重复各随机选取体重在110kg左右猪6头，共12头。在自由饮水下禁食24h，宰前称重，屠宰在试验猪场屠宰场进行。
1．2．3样品收集
(1) 饲料采集：从两种不同的饲料袋中选取3-5个不同的采样点分别取样，然后混合得原始样品，用于常规分析和淀粉含量的测定。
(2)食糜内容物：用灭菌2mL离心管取回肠、盲肠和结肠内容物各2管，保存于冰块中带回实验室-20℃冰箱中保存，用于短链脂肪酸分析。用50mL离心管取回肠、盲肠和结肠内容物各2管，用于常规分析和淀粉含量的测定。
1．2．4测定项目
(1)淀粉含量测定：淀粉和抗性淀粉试剂盒测定[10]（RESISTANT STARCH ASSAT PROCEDURE K-RSTAR 08/11 AOAC Method 2002.02 ; AACC Method 32-40）
摘要：本文旨在探讨不同来源淀粉日粮对猪肠道pH值，淀粉含量和短链脂肪酸（SCFAs）的影响。实验采用36头30kg的杜长大三元杂交公猪，分成对照组和试验组2个处理组，每个处理设3个重复栏，每栏6头猪。对照组饲喂含玉米淀粉的饲粮，试验组饲喂含等量的土豆淀粉的饲粮。试验结束时分别收集猪的回肠、盲肠和结肠的内容物，测定其pH值，淀粉含量和短链脂肪酸浓度。结果发现，土豆淀粉能够降低猪后肠的pH值，增加肠道内容物淀粉的含量，并且能促进短链脂肪酸的生成，尤其是丁酸的生成。结果说明，土豆淀粉有助于维持肠道健康，酸化肠道环境，促进有益产物SCFA的生成。
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关键字:淀粉；pH值；淀粉含量；短链脂肪酸
目录
摘要3
关键词3
Abstract3
Key words3
引言3
1材料与方法4
1.1材料 4
1.1.1试验淀粉4
1.1.2试验动物4
1.1.3试验猪基础日粮及营养水平4
1.2实验方法 4
1.2.1饲养试验4
1.2.2屠宰试验5
1.2.3样品收集5
1.2.4测定项目5
1.3数据处理 5
2结果与分析5
2.1不同类型淀粉对猪后肠PH值的影响5
2.2日粮及猪消化道内容物中的淀粉含量6
2.3不同淀粉来源对盲肠和结肠内容物中短链脂肪酸浓度的影响6
3讨论 8
4结论 9
致谢9
参考文献9
土豆淀粉对猪肠道pH值，淀粉含量和短链脂肪酸的影响
引言
引言
淀粉是谷物类饲料中主要的碳水化合物，按不同的分类标准可分为不同的种类。Englyst等依据淀粉的生物可利用性将淀粉分为3类[1]：快速消化淀粉( ready digestible starch , RDS)、缓慢消化淀粉(slowly digestible starch , SDS)和抗性淀粉( resistant starch , RS)。其中RS与前两种不同，它不能被小肠中的淀粉酶水解，本身或其降解产物能原封不动地到达结肠并被此处的微生物菌群发酵，从而发挥有益的生理作用。此现象引起了营养学家、生理学家和医学工作者的广泛兴趣。1993年，欧洲抗性淀粉协会( EURESTA)将RS定义为：不被健康人体小肠吸收的淀粉 *好棒文|www.hbsrm.com +Q: ￥3^5`1^9`1^6^0`7^2$
及其降解产物的总和[2]。RS在结肠中发酵, 其代谢产物能较好地维持肠道酸性环境，加快食物在肠道内的转运速度，促进动物排便、增大粪便体积，使粪便水分含量增加、软化粪便[3]。然而， RS 自身直接产生的作用较少，这些功效主要通过结肠内发酵产生的次生产物，以及影响其它物质的代谢从而得到发挥。RS在大肠中被结肠微生物（厌氧菌）发酵或部分发酵后，产生挥发性SCFA、二氧化碳、甲烷和乙烷[4]。SCFA是大肠内细菌代谢的主要终产物，RS的多种生理功能主要是通过SCFA的调节来实现的[5-6]。SCFA 主要为乙酸、丙酸、丁酸等（含量大小顺序为乙酸>丙酸>丁酸），这些营养成分在生物代谢中发挥了重要作用。其中以丁酸的作用最强，丁酸不仅可以作为大肠上皮细胞尤其是末段结肠粘膜的主要能量底物、结肠菌的最好能源[7]，还可以影响营养物质的消化代谢和肠道微生物区系、增加免疫、促进肠道组织生长、调节肠道电解质平衡、降低肠道pH、提高某些消化酶的活性和抗氧化性能，以及增加肠道粘液素的分泌和抑制癌细胞生长[8-9]。
本实验主要以猪为对象，通过添加玉米淀粉和土豆淀粉两种不同类型的抗性淀粉，通过选择土豆淀粉( 抗性淀粉)和玉米淀粉( 可消化淀粉) 作为两种不同的淀粉来源，来研究这两种不同的淀粉对生长育肥猪后肠道pH值，淀粉含量和短链脂肪酸的影响。从不同碳水化合物对猪后肠健康指标的影响角度为合理选择碳水化合物的类型提供依据。
1 材料与方法
1．1试验材料
1．1．1试验淀粉 玉米抗性淀粉、土豆抗性淀粉。
1．1．2 试验动物 杜长大( 杜洛克♂，长白×大约克♀) 三元杂交猪。
1．1．3 试验猪基础日粮及营养水平 见表1
表1试验猪基础日粮及营养水平
日粮 生长期 育肥期
玉米淀粉组 土豆淀粉组 玉米淀粉组 土豆淀粉组
营养成分 (g/kg)
玉米淀粉 230.0 - 280.0 -
土豆淀粉 - 230.0 - 280.0
玉米 360.0 360.0 360.0 360.0
麦麸 90.0 90.0 120.0 120.0
豆粕 250.0 250.0 210.0 210.0
膨化大豆 30.0 30.0 - -
豆油 8.0 8.0 - -
磷酸氢钙 9.8 9.8 8.8 8.8
石灰石 7.8 7.8 7.7 7.7
氯化钠 3.0 3.0 3.0 3.0
维生素和矿物质预混料 10.0 10.0 10.0 10.0
L-赖氨酸 1.0 1.0 0.5 0.5
L-蛋氨酸 0.4 0.4
营养指数 (g/kg)
粗蛋白 174.5 174.5 147.3 147.3
淀粉 505.6 504.5 550.2 549.5
灰分 72.1 73.2 61.0 61.6
中性洗涤纤维 95.77 95.78 102.5 102.6
脂肪 32.0 32.0 19.0 19.0
/> 赖氨酸 9.8 9.8 8.0 8.0
表注：维生素和矿物质预混料(1%): VA 11000 IU；VD3 1000 IU； VE 16 IU； VK1 1mg； VB1 0.6 mg； VB2 0.6 mg； VB12 0.03 mg； VB6 1.5 mg； D-泛酸 6 mg； 烟酸10 mg； 叶酸 0.8mg； 胆碱800 mg； Fe 165 mg； Zn 165 mg； Cu 16.5 mg； Mn 30 mg；Co 0.15 mg； I 0.25 mg； Se 0.25mg.
1．2 试验方法
1．2．1 饲养试验
选择36头体重在23.78±1.87kg范围70天左右的杜长大杂交公猪，分成2个处理组，每组设6个重复，每个重复3头猪。两组分别饲喂玉米淀粉组和土豆淀粉组饲粮，在生长期，玉米淀粉和土豆淀粉占日粮的比列均是250 g/kg，当猪到达120日龄时，根据动物生长的营养需求调整纯化淀粉的含量，玉米淀粉和土豆淀粉占日粮的比列均是350 g/kg；重复组所饲喂的饲粮相同。试验预饲期为7天。饲喂方法采用群饲，自由采食，自由饮水。试验猪屠宰体重为110kg左右。
1．2．2屠宰试验
饲养试验结束后从对照组和试验组中每个重复各随机选取体重在110kg左右猪6头，共12头。在自由饮水下禁食24h，宰前称重，屠宰在试验猪场屠宰场进行。
1．2．3样品收集
(1) 饲料采集：从两种不同的饲料袋中选取3-5个不同的采样点分别取样，然后混合得原始样品，用于常规分析和淀粉含量的测定。
(2)食糜内容物：用灭菌2mL离心管取回肠、盲肠和结肠内容物各2管，保存于冰块中带回实验室-20℃冰箱中保存，用于短链脂肪酸分析。用50mL离心管取回肠、盲肠和结肠内容物各2管，用于常规分析和淀粉含量的测定。
1．2．4测定项目
(1)淀粉含量测定：淀粉和抗性淀粉试剂盒测定[10]（RESISTANT STARCH ASSAT PROCEDURE K-RSTAR 08/11 AOAC Method 2002.02 ; AACC Method 32-40）
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